1. 從液氮容器中取出凍存管,,直接浸入37℃溫水中,,并不時搖動令其盡快融化。
2. 從37℃水浴中取出凍存管,,打開蓋子,用吸管吸出細胞懸液,,加到離心管并滴加10倍以上培養(yǎng)液,,混勻;
3. 離心,, 1000rpm,,凍存袋供應商,5min,;
4. 棄去上清液,,加入含10%小牛血培養(yǎng)液重懸細胞,計數(shù),,調整細胞密度,,接種培養(yǎng)瓶,37℃培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng),;
5. 次日更換一次培養(yǎng)液,,繼續(xù)培養(yǎng)。
1.操作人員應戴防護面罩及手套,,防止冷凍管可能爆裂之傷害,。
2.自液氮或干冰容器中取出冷凍管,檢查蓋子是否旋緊,,由于熱脹冷縮過程,,此時蓋子易松掉。
3.將新鮮培養(yǎng)基置于37℃水槽中回溫,,回溫后噴以70酒精并擦拭之,,移入無菌操作臺內。
4.取出冷凍管,,立即放入3℃水槽中快速解凍,,輕搖冷凍管使其在1分鐘內全部融化,以7o%酒精擦拭保存管外部,,移入無菌操作臺內,。
5.取出解凍之細胞懸浮液,緩緩加入有培養(yǎng)基之培養(yǎng)容器內(稀釋比例為1:10~1:15),,混合均勻,,cs250凍存袋供應商,放入培養(yǎng)箱培養(yǎng),。取0.1m1解凍細胞懸浮液作存活測試,。
6.解凍后是否立即去除冷凍保護劑,,依細胞種類而異,一般而言,,大都不需要立即去除冷凍保護劑,。
目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進行培養(yǎng),,第二天換液,。因為離心的目的是兩個,去除 dmso,,去除---,,cs50凍存袋供應商,這個是標準流程,,但對一般人來說,,把握不好離心轉速和時間,轉的不夠沉底的少,,細胞就全被扔掉了,,轉過了會受壓過大, ,。此外在操作過程中容易污染,,所以不。另一種說法為細胞懸液中含有二---dmso,,dmso對細胞有一定的毒副作用,,所以須將離心后的液 體前倒凈,且一定倒干凈,。我在試驗中按照常規(guī)的離心分裝的方法進行復蘇,,結果無有異常。
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